Le Filet de l’éleveur: Un Mode d’emploi Simple Sur La Culture Domestique De Copépodes

Bien que certains poissons marins se reproduisent et grandissent assez facilement en captivité, d’autres sont plus problématiques. L’une des difficultés majeures de l’élevage de ces poissons est l’approvisionnement en nourriture appropriée pour les larves. Dans la nature, de nombreux poissons marins dépendent des copépodes comme premier aliment, mais très peu d’espèces de copépodes marins ont été cultivées avec succès à une échelle adaptée à l’aquaculture domestique. Espérons que cette colonne fournira un contexte de base sur la biologie et le cycle de vie des copépodes, ainsi qu’une procédure simple pour cultiver vos propres copépodes. Les procédures décrites ci-dessous sont tirées d’une compréhension de base des exigences de la vie de l’animal et d’une compréhension pratique de ce à quoi un amateur de maison a accès. À mon avis, la culture de copépodes peut apporter une contribution importante dans l’aquaculture domestique, lorsque les alevins de poisson sont trop petits pour manger des rotifères comme premier aliment.

Il est bien connu que pour de nombreuses espèces de poissons alevins, la nourriture vivante est essentielle aux premiers stades critiques des premières tétées. Dans les océans, les aliments potentiels les plus susceptibles d’être rencontrés par les larves de poissons sont les stades nauplius des copépodes. Les copépodes ont probablement joué un rôle important dans l’alimentation de nombreux poissons au cours de leur évolution et des stratégies de prédation efficaces ont évolué pour capturer les copépodes comme aliments primaires. Les copépodes marins conviennent particulièrement comme aliments pour les alevins de poisson. La gamme de tailles (nauplii 100uM à adulte 1000uM) s’adapte à la bouche de nombreux poissons larvaires. Les copépodes nauplii suscitent une forte réponse alimentaire de la part de nombreuses larves de poissons, et les copépodes ont naturellement des niveaux plus élevés d’acides essentiellement gras.

Actuellement, le moyen le plus simple de fournir des copépodes pour l’aquaculture domestique est de les capturer via un filet dans la nature; cependant, puisque notre colonne se concentre sur la culture domestique, nous expliquerons un simple mode d’emploi des copépodes de culture domestique.

Copépodes

Les copépodes sont une classe d’animaux appartenant au groupe plus large des Crustacés. Le groupe est diversifié, avec plus de 10 000 espèces différentes dans de nombreuses niches écologiques différentes. Les copépodes sont présents dans la plupart des corps marins et d’eau douce. De nombreuses espèces de copépodes sont parasitaires, d’autres nagent librement dans le cadre du plancton, tandis que d’autres encore sont benthiques (logement au fond) ou vivent sur ou autour d’autres organismes. Peu de copépodes en liberté dépassent 2 mm de longueur à l’âge adulte. Trois grands groupes de copépodes libres ont été identifiés: les Calanoida, principalement des animaux planctoniques nageant librement, Les Cyclopoida, qui peuvent être planctoniques ou démersaux, et les Harpacticoida, qui sont entièrement benthiques.

Les copépodes passent par des étapes de vie très distinctes. Ils émergent d’un œuf sous la forme d’un nauplie, généralement de 100 à 150 cm de long. Après six stades nauplius (appelés stades N1 à N6), avec une croissance entre chaque stade, la forme du corps change et une série de six stades copépodides généralement suivent (appelés stades C1 à C6). La dernière de ces étapes est l’adulte chez lequel des sexes différents peuvent être identifiés. La reproduction est de nature sexuée, et dans certaines parties de la mer, les larves nauplius des copépodes calanoïdes sont les animaux métazoaires les plus abondants.

Cycle vital et développement

Les œufs fécondés sont maintenus dans un sac contre l’urosome de la femelle. Lors de la première libération, les œufs apparaissent brun foncé. Au fur et à mesure que les embryons se développent, la couleur et l’ombre s’éclaircissent jusqu’à ce que les embryons matures apparaissent brun clair avec une tache oculaire sombre juste visible dans chacun. Les larves de Nauplius émergent du sac d’œufs et nagent librement. Les nauplii nouvellement libérés ont jusqu’à quatre ou cinq petites gouttelettes lipidiques régulièrement disposées dans leur cavité corporelle. Le premier stade nauplius (N1) est très bref (quelques heures) avant que les animaux ne se métamorphosent en N2, puis une croissance rapide en N6. Après N6, le premier stade copépodide (C1) se produit. À ce stade, la forme générale du corps est passée de la « forme de poire » du nauplie à la forme générale de l’adulte avec des premières antennes bien visibles et une division distincte entre le prosome et l’urosome. Au fur et à mesure que l’animal se développe aux stades C1 à C6, le nombre de paires de pattes nageuses passe de un à cinq et la taille totale augmente. Entre chaque stade de développement, les animaux perdent l’exosquelette précédent. Au stade C5, les antennes géniculées des mâles peuvent simplement être détectées, mais par C6 (adulte), cette caractéristique est remarquable. La longueur du prosome des femelles est légèrement plus grande que celle des mâles. Lorsque le stade final (C6 ou adulte) est atteint, il ne se produit plus de mue. Le temps de développement dépend de la température. À 25°C, les stades embryonnaire et nauplius sont complétés en 4 à 5 jours et la pleine maturité (embryon-adulte) en un total de 10 à 12 jours. Les Nauplii nagent continuellement et sont attirés par la lumière directionnelle. Les stades copépodides sont progressivement moins attirés par la lumière et au stade C4 commencent à se fixer sur les substrats. Les animaux matures se fixent aux substrats pendant des durées variant entre secondes et minutes.

Habitat

Les populations de copépodes sont situées dans des habitats où la salinité varie de l’eau presque douce à > 35ppt. Ils peuvent résister à des températures comprises entre 10 et 28 ° C et à une qualité de l’eau assez suspecte.

À titre d’exemple, G. imparipes, en tant qu’animaux individuels, peut résister aux changements de salinité sur une large gamme. Ils peuvent survivre à des températures de ~ 6 ° C à 28 ° C et peuvent tolérer des périodes sans nourriture. Les copépodes adultes peuvent stocker de l’énergie dans de grandes réserves lipidiques et persister sans nourriture supplémentaire. Les embryons sont protégés en étant transportés jusqu’à l’éclosion des nauplii en nage libre et le taux de survie des juvéniles est augmenté par l’investissement parental des réserves alimentaires dans l’embryon. Cela indique que de nombreuses espèces de copépodes sont suffisamment robustes pour résister aux rigueurs de la culture à domicile.

Température

Bien que de nombreux copépodes puissent survivre dans une large plage de températures (6 à 28 ° C), le meilleur équilibre entre la santé animale et la production de culture se situe entre 20 et 25 ° C. À des températures plus basses, les taux de croissance et de production d’œufs diminuent, et à des températures plus élevées, la qualité de l’eau dans la culture est difficile à maintenir. Les animaux peuvent être maintenus dans la plage de température recommandée, puis utilisés à une température plus élevée.

Mouvement

De nombreux copépodes calanoïdes possèdent deux modes de locomotion différents. Un mouvement de nage lisse et glissant est obtenu par la force produite par le balayage à haute fréquence des deuxièmes antennes. Ce mouvement réalise à la fois un mouvement d’alimentation et de natation. L’orientation typique du corps lors de la nage est avec le corps maintenu à 45 ° par rapport à l’horizontale.

Un mouvement plus rapide dans l’eau se produit lorsque les animaux « rament » avec les cinq paires de pattes, ce qui entraîne de brefs moments de mouvement saccadé sur de nombreuses longueurs de corps.

Taille du corps

Les copépodes au premier stade nauplius mesurent 125 µm de long et 65 µm de large. Ceux-ci atteignent ~ 310 µm de long par N6. Pour les copépodidés et les adultes, la longueur du prosome est le descripteur de taille le plus pratique. Les G. imparipes adultes ont des longueurs de prosome de 750 µm à 950 µm selon la température à laquelle ils se sont développés. Comme pour les autres animaux invertébrés, le taux de croissance est réduit à l’extrémité inférieure de la plage de température tolérable, tandis que la taille corporelle finale des adultes est plus grande pour ceux qui poussent dans des eaux plus froides que pour ceux qui poussent dans des eaux plus chaudes.

Contenu nutritionnel

Tous les copépodes n’ont pas la même valeur que le régime alimentaire des poissons larvaires. Les poissons larvaires ont besoin d’une chaîne particulièrement longue d’acides gras insaturés (HUFA) dans leur alimentation pour assurer le développement normal de leur système nerveux. Ces HUFA ne sont pas synthétisés par les animaux mais sont produits par les phytoplanctons. Les copépodes bien nourris sont susceptibles d’avoir des réserves de ces HUFAs et donc d’être bénéfiques dans l’alimentation des poissons. Ces copépodes, qui se nourrissent de détritus ou de prédation sur des ciliés ou des rotifères, ont une plus grande proportion d’acides gras dans leurs réserves qui ont été synthétisés à partir de bactéries plutôt que de phytoplanctons. Ces copépodes ont une valeur moindre dans leur alimentation pour les poissons larvaires.

Si les copépodes, qui stockent des niveaux élevés de lipides et transportent des embryons dans une couvée, ont des phytoplanctons appropriés dans leur alimentation, leur valeur en tant qu’aliment pour les poissons augmente. Une population saine de ces copépodes enrichis en phytoplancton comprendra des femelles adultes avec de la nourriture algale fraîche dans leur intestin, des lipides stockés et des œufs se développant dans leurs voies reproductrices. Des études ont montré que ces animaux enrichis étaient préférentiellement sélectionnés en nourrissant les poissons.

Alimentation

Les appendices d’alimentation sur la partie supérieure du prosome sont utilisés pour la collecte des aliments. Lorsque le copépode se nourrit, les deuxièmes antennes balaient très rapidement en arrière et en avant pour générer un courant d’eau qui s’écoule à travers des peignes de fines soies sur le premier et le deuxième maxillaire. Ces setaes éliminent les particules alimentaires potentielles de l’eau. La nourriture est ensuite transférée dans la bouche. Chez les animaux qui se nourrissent activement, l’intestin semble coloré par la nourriture ingérée. Lorsque les copépodes ont accès à une nourriture abondante, ils produisent des excréments à des intervalles d’environ 20 minutes. Les granulés fécaux peuvent généralement être vus dans l’intestin inférieur des animaux bien nourris. Chaque pastille est contenue dans une membrane de chitine, qui est libérée par l’animal.

Culture de copépodes

Il existe de nombreuses raisons de cultiver des copépodes et chacune de ces raisons a son propre ensemble d’exigences pour évaluer le succès. Aux fins de cette discussion, nous utiliserons la base de la culture des copépodes pour fournir une nourriture vivante plus diversifiée pour un aquarium récifal. Il faut également comprendre que ce n’est qu’une façon d’obtenir les résultats souhaités et que, comme la plupart des choses dans ce passe-temps, il existe de nombreuses façons de réussir.

Pièces

La première étape, comme dans tout projet, consiste à assembler les pièces dont nous aurons besoin pour le projet.

• 1 – 10 réservoir gal
• 1- Petite pompe à air
• vanne d’air 1 – 2 gangs
• 1 – 36″ Tube rigide ¼ » (coupé en deux morceaux égaux)
• 1 – 12″ section de ¼ » compagnie aérienne
• 1 – 24″ section de ¼ » compagnie aérienne
• 1 – 36″ section de ¼ « airline
• 1 – Couvercle en acrylique avec trous pour tube rigide

Assemblage

L’étape suivante consiste à assembler les pièces.

1. Raccordez la pompe à air à la vanne à bande avec la section de 12″ de la ligne aérienne ¼ ».
2. Connectez chaque vanne de bande aux deux sections restantes de la ligne aérienne.
3. Raccordez un morceau de tube rigide aux extrémités des deux sections de la ligne aérienne.
4. Insérez le tube rigide dans deux des trous du couvercle en acrylique. Placez-les aux extrémités opposées du réservoir. Cela permettra un meilleur écoulement dans le réservoir.

Sélectionnez une source de phytoplancton pour nourrir les copépodes

Le phytoplancton peut être trouvé à partir de nombreuses sources, y compris la culture à domicile. Le phytoplancton disponible dans le commerce aura tendance à être plus concentré que les cultures locales. Sur la photo, voici des exemples de Phytoplancton marin vivant de DT, de régime alimentaire en direct de plancton de Reed Mariculture et de la bouteille typique de phytoplancton cultivé à la maison de 2 litres. Quelle que soit la source que vous décidez d’utiliser, assurez-vous d’utiliser conformément aux instructions pour éviter la contamination et la détérioration.

La nannochlropose est mon phytoplancton préféré pour nourrir les copépodes. D’autres peuvent fonctionner aussi bien ou mieux, mais Nannochlropsis est largement disponible à partir de sources commerciales et locales.

Une fois que nous avons le phytoplancton, nous devons remplir le réservoir de culture avec une quantité appropriée de phytoplancton. Pour éviter les déversements et une partie du désordre, je remplis généralement le réservoir moins de la moitié.

Maintenant, nous avons le réservoir de culture rempli et prêt pour les copépodes, pas encore. Nous devons nous assurer que les paramètres du réservoir de culture sont dans les plages.

Température – Pour la culture des copépodes, je n’utilise pas de chauffe-cuve. J’ai eu beaucoup de succès avec la température ambiante. Alors, quelle est la température ambiante? Cela signifie une pièce généralement considérée comme confortable. Cela n’inclut pas la pièce sans isolation du côté nord-ouest d’une maison dans les plaines du Dakota du Nord en janvier.

Salinité – Il est préférable de faire correspondre le réservoir de culture au réservoir à alimenter. Cela permet d’éliminer la possibilité de choc de salinité pour les copépodes.

Flux d’air – Avec le réservoir de culture rempli de phytoplancton, nous pouvons configurer le flux d’air. Cela n’a pas besoin d’être énergique, mais doit fournir une certaine circulation. J’ai trouvé que l’ajustement du débit d’air à un taux suffisamment lent pour compter les bulles était adéquat.Éclairage

– Éclairage ambiant de la pièce ou éclairage fluorescent de faible puissance.

Ajout des copépodes

Si nous avons terminé avec succès tout ce qui précède, nous pouvons maintenant ajouter les copépodes. Lors de l’ajout des copépodes, essayez de vous assurer qu’ils sont proches des mêmes paramètres d’eau que ceux du réservoir de culture. Sinon, essayez de les « acclimater » lentement, bien qu’ils soient assez robustes. Les procédures d’acclimatation standard fonctionneront bien.

Culture

Avec le phytoplancton et les copépodes ajoutés au réservoir et le flux d’air correctement mis en place, nous cultivons maintenant des copépodes. On a commencé. L’idée est de garder une teinte verte à l’eau, le plus vert sera le meilleur pour cultiver des copépodes pour alimenter le réservoir cible. Lorsque l’eau prend de la couleur, ajoutez plus de phytoplancton. Une fois que nous atteignons la densité souhaitée, nous pouvons commencer à alimenter le réservoir cible.

Quelle densité cherchons-nous à atteindre avant de commencer à nous nourrir? Cela dépend du réservoir cible. Une fois que vous commencez à voir des copépodes se rassembler sur le verre du réservoir, vous avez probablement une bonne densité.

Ces images montrent un réservoir de copépodes qui a consommé le phytoplancton et l’eau de culture est devenue claire.

La couleur claire de l’eau de culture n’est pas une « mauvaise chose », mais c’est quelque chose que nous devrions essayer d’éviter. Si cela se produit, il nous reste deux options:

1. Ajoutez plus de phytoplancton dans le réservoir de culture pour redonner à l’eau une couleur verte.
2. Vidangez le réservoir à travers une passoire (53 microns fonctionnent bien), puis lavez à contre-courant les copépodes dans le réservoir de culture avec du phytoplancton frais. Lors de la vidange du réservoir, j’utilise un tube rigide de petit diamètre pour siphonner l’eau et les copépodes. Lorsque vous vidangez / siphonnez le réservoir, essayez de minimiser la quantité de « crasse » qui est siphonnée.

La « crasse » qui s’accumule au fond du réservoir est normale. Finalement, nous devrons changer l’eau de culture et redémarrer la culture. Cela peut être fait en suivant l’option 2 ci-dessus.

Alimentation

Les méthodes d’alimentation varient d’une personne à l’autre. Je vais rapidement décrire les deux méthodes que j’utilise pour alimenter mes réservoirs.

1. Prélevez la quantité d’alimentation souhaitée dans le réservoir de culture et versez-la dans le réservoir cible. Remplacez la quantité d’alimentation prélevée dans le réservoir de culture par du phytoplancton frais. Parce que c’est simple, c’est ma méthode préférée.
2. La deuxième méthode consiste à faire la même chose que ci-dessus, à l’exception de filtrer les copépodes de l’eau de culture, puis de les laver à contre-courant dans le réservoir cible. Cela réduit la quantité d’eau du réservoir de culture ajoutée au réservoir cible.

Contamination croisée des cultures

Je n’ai constaté aucun effet néfaste de la contamination croisée des cultures, à l’exception des crevettes saumurées. Il semble que les crevettes saumurées mangent presque n’importe quoi et cela inclut les copépodes. Il est possible d’avoir une double culture de copépodes et de rotifères.

Notes diverses

1. Ne vous inquiétez pas si l’eau devient claire. J’ai eu des copépodes dans une bouteille de 2 litres sans ajout de phytoplancton pendant près de 3 mois. Ils auraient pu durer plus longtemps, mais j’ai ajouté du phytoplancton.
2. Divisez le réservoir de 10 gal en deux sections égales avec un morceau de plexiglas. Cela vous permet d’avoir deux cultures de copépodes et vous donne une certaine redondance en cas de crash de culture.
3. N’ayez pas peur d’alimenter le réservoir cible. J’ai délibérément nourri de grandes quantités de copépodes dans mon réservoir principal, et je n’ai pas encore vu d’impact négatif.
4. Essayez de changer l’eau du réservoir de culture toutes les 4 semaines en moyenne ou selon les paramètres de l’eau. Cela aidera à maintenir la qualité de l’eau de culture plus élevée.
5. Lors de l’alimentation à partir du réservoir de culture, essayez de ne pas ramasser le fond du réservoir de culture. Si vous ramassez le fond du réservoir, vous remuez beaucoup de déchets qui peuvent ensuite être mis dans votre réservoir cible.
6. Partagez vos cultures avec les autres et éduquez-les sur la facilité de cultiver des aliments vivants.