Di Gary D. Norsworthy, DVM, DABVP (feline)
Quante volte hai sentito, ” I gatti non sono cani di piccola taglia?”Abbiamo pagato a parole questo concetto per tutta la durata della mia carriera di quasi 50 anni. Tuttavia, la base per questo è molto reale in molti scenari. La raccolta del sangue per i pannelli di chimica e la conta ematica completa (CBC) è uno di questi.
Il gatto ha piccole vene, spesso più piccole delle corrispondenti vene dei cani perché le dimensioni del corpo del gatto sono così piccole. Raccogliere abbastanza sangue per un pannello di chimica e CBC può essere difficile al punto che può servire come deterrente per diagnosticare correttamente i disturbi dei nostri pazienti. Se è difficile da fare, spesso non viene fatto.
Viene spesso utilizzata la vena giugulare. Tuttavia, farlo in presenza di proprietari di gatti crea alcuni seri problemi di relazione con il cliente. (Questo non è stato un problema, ovviamente, durante la norma non presente della pandemia.) Vero o no, sembra abbastanza crudele. Se i capelli sono rasati, la pelle nuda serve come promemoria per due o tre mesi.
Un’alternativa alla raccolta del sangue giugulare è quella di portare il gatto “sul retro” – quel buco nero in cui fai cose che non vuoi che i tuoi clienti vedano. Durante il tempo che sta accadendo, il tuo cliente sta immaginando più scenari peggiori. Se un gatto in ospedale grida, il proprietario presume che sia stato il suo gatto a farlo e viene maltrattato.
A mio parere, l’approccio migliore è quello di utilizzare la vena safena mediale, a volte chiamata “Dono di Dio al praticante felino.”Di solito è abbastanza grande per un prelievo di sangue ragionevolmente sufficiente, ed è sul lato mediale della gamba. Se i capelli sono rasati, la pelle nuda è molto meno visibile del solco giugulare.
Tuttavia, la vena safena mediale ha limitazioni in molti gatti. Spesso è così piccolo che 1-2 millilitri di sangue non possono essere raccolti e, se lo è, la coagulazione si verifica spesso nella siringa. Di seguito condividerò come ho conquistato questo problema felino.
Molti anni fa, ho sviluppato un forte desiderio di avere risposte rapidamente. Aspettare qualche giorno o anche fino a domani stava rendendo difficile diagnosticare pazienti gravemente malati e monitorarli quando erano in ospedale. Pertanto, ho acquistato macchine per la chimica e l’ematologia Abaxis (ora Zoetis Diagnostics). È stato incredibile come questo migliorasse la cura del paziente e le relazioni con i clienti.
Tuttavia, sono rimasti più ostacoli. La seguente tecnica è stata convalidata in un documento pubblicato di recente.1
Ostacolo n. 1 e la sua soluzione. Ci è stato insegnato a usare un ago da 20 gauge per la raccolta del sangue perché l’uso di quelli più piccoli spesso si traduce in emolisi. Questa procedura si basa sull’utilizzo di tubi di raccolta contenenti vuoto ed è lo standard di cura nella medicina umana.
Foto per gentile concessione di Gary D. Norsworthy
Tuttavia, non sto usando un tubo come questo perché la quantità di vuoto spesso crolla piccole vene del gatto. Piuttosto, uso una siringa da 3 cc con un ago da 25 gauge. Il sangue viene prelevato costantemente e relativamente lentamente per evitare l’emolisi del campione. Se si verifica un pareggio lento, la velocità di raccolta viene ulteriormente rallentata.
Ostacolo n. 2 e sua soluzione. Poiché la raccolta del sangue può essere lenta dalla vena safena mediale, la coagulazione del campione si verifica spesso nella siringa, rendendo il campione inaccettabile per la macchina chimica e le macchine ematologiche.
La soluzione è il tallone nel tubo di eparina di litio (LH) utilizzato con la macchina chimica. Tolgo il tallone dal tubo LH e lo metto nella siringa. (Figura 1) Anche se il suo scopo dichiarato è quello di aiutare la corretta miscelazione del campione di sangue, il tallone ha abbastanza LH su di esso per anticoagulare il sangue non appena entra nella siringa. (Figura 2) Con questo approccio, anche il più lento dei prelievi di sangue produce ancora un campione anticoagulante adatto per la macchina chimica.
Ostacolo n.3. In genere, le istruzioni del produttore indicano che si dovrebbe mettere 1,3 ml di sangue nel tubo LH per avere il giusto rapporto tra il sangue e l’LH; tuttavia, solo circa 0,25 ml vengono effettivamente utilizzati per eseguire il test. Sebbene alcuni gatti abbiano vene safene mediali che scorrono bene, molti no. In alcuni gatti, non è possibile raccogliere più di 0,5 ml di sangue.
Ostacolo n.4. Le istruzioni del produttore indicano che solo il sangue trattato con acido tetraacetico etilendiammina (EDTA) deve essere inserito nella macchina ematologica.
Soluzioni ai n. 3 e n. 4. Il sangue viene raccolto con una siringa da 3 cc e un ago da 25 gauge. Se riesco a ottenere circa 1,3 ml di sangue, lo faccio. Se riesco a ottenere solo 0,5 ml, il nostro studio dimostra che è anche accettabile.
I rotori indicati vengono caricati direttamente dalla siringa. Il resto del sangue viene inserito nel tubo EDTA realizzato per la macchina ematologica. Il tubo viene inserito nella macchina e il campione viene eseguito. Entro circa 15 minuti dalla raccolta del sangue, ho i risultati di un profilo chimico con elettroliti, un T4 totale e un CBC. Ora sono pronto a parlare con il proprietario della diagnosi e/o del piano di trattamento del gatto.
Ostacolo n. 5 e sua soluzione. Ci è stato insegnato che l’eparina cambierà la morfologia dei globuli bianchi, quindi l’interpretazione dello striscio di sangue sarà imprecisa.
Sei strisci di sangue sono stati fatti sui campioni di ciascun gatto nello studio. Tre vetrini sono stati fatti dal sangue immediatamente dopo il prelievo di sangue; non è stato esposto ad alcun anticoagulante. Tre sono stati fatti dopo essere stati esposti a eparina di litio, più EDTA. Ognuno era macchiato con una macchia di sangue rapida di tipo Romanowsky. Sono stati letti da un patologo clinico veterinario certificato dal consiglio. Tuttavia, fu accecato dalla fonte delle macchie di sangue. È stato specificamente incaricato di osservare i cambiamenti morfologici che renderebbero difficile l’identificazione delle cellule. Nessuna è stata trovata e tutte le diapositive sono state ritenute di qualità sufficiente per l’interpretazione.
Risultato complessivo
Se lo fai, cosa succederà? Innanzitutto, utilizzerai molti più rotori chimici e reagenti ematologici rispetto al passato. In secondo luogo, è probabile che l’aumento di volume ti farà prendere in considerazione l’acquisto di una o più macchine aggiuntive. (Ho sei macchine di chimica e due macchine di ematologia. In terzo luogo, la cura del paziente migliorerà, perché si sta facendo più diagnostica a base di sangue. Infine, la tua pratica crescerà man mano che i clienti sempre più soddisfatti raccontano ai loro amici la straordinaria cura che i loro gatti hanno ricevuto nella tua pratica.
Nota: Questa tecnica è stata convalidata per le macchine Zoetis Diagnostics Chemistry and hematology. Il suo utilizzo su altre macchine non è raccomandato fino a quando non vengono eseguiti studi simili su tali macchine.
Nota: L’unico analita che è stato influenzato negativamente è stata la conta piastrinica. Può essere falsamente aumentato o diminuito. Pertanto, se la conta piastrinica non sembra valida, si dovrebbe esaminare uno striscio di sangue macchiato.
A causa di questa tecnica, eseguiamo esami del sangue su oltre il 50% dei gatti che vediamo. Abbiamo una media di 337 profili di chimica e 139 CBC al mese nella nostra pratica felina di tre medici. Inoltre, abbiamo anche una media di 148 pannelli tiroidei (TT4 + colesterolo). Immagina cosa potrebbe fare questa tecnica per la tua pratica.
Gary D. Norsworthy, DVM, DABVP (feline), è il proprietario di Alamo Feline Health Center a San Antonio, Texas. È stato in uno studio privato per 48 anni, di cui 23 in pratica solo felina. Il Dr. Norsworthy tiene spesso lezioni sulle malattie feline ed è l’editore e l’autore principale di sette libri di testo felini. È uno specialista felino certificato dal consiglio di amministrazione (uno dei due nel Texas meridionale) e professore aggiunto presso il College of Veterinary Medicine, la Mississippi State University e la Western University of Health Sciences. Ha ricevuto il 2020 Distinguished Career Achievement Award dalla Texas Veterinary Medical Association.
