Por Gary D. Norsworthy, DVM, DABVP (feline)
¿Con qué frecuencia has escuchado, » Los gatos no son perros pequeños?»Hemos hablado de este concepto durante los casi 50 años de mi carrera. Sin embargo, la base para ello es muy real en muchos escenarios. La extracción de sangre para los análisis químicos y los recuentos sanguíneos completos (CSC, por sus siglas en inglés) es uno de ellos.
El gato tiene venas pequeñas, a menudo más pequeñas que las venas correspondientes de los perros porque el tamaño corporal del gato es muy pequeño. Recolectar suficiente sangre para un panel químico y un CBC puede ser un desafío hasta el punto de que puede servir como un elemento disuasorio para diagnosticar adecuadamente las dolencias de nuestros pacientes. Si es difícil de hacer, a menudo no se hace.
A menudo se usa la vena yugular. Sin embargo, hacerlo en presencia de propietarios de gatos crea algunos problemas graves de relación con el cliente. (Esto no ha sido un problema, por supuesto, durante la norma de ausencia de clientes presentes de la pandemia. Cierto o no, parece bastante cruel. Si se afeita el cabello, la piel desnuda sirve como recordatorio durante dos o tres meses.
Una alternativa a la extracción de sangre yugular es llevar al gato a» la espalda», ese agujero negro donde haces cosas que no quieres que tus clientes vean. Durante el tiempo que está sucediendo, su cliente está imaginando múltiples escenarios del peor de los casos. Si algún gato en el hospital grita, el dueño asume que fue su gato quien lo hizo y está siendo maltratado.
En mi opinión, el mejor enfoque es usar la vena safena medial, a veces llamada «regalo de Dios para el practicante felino».»Por lo general, es lo suficientemente grande para una extracción de sangre razonablemente suficiente, y está en el lado medial de la pierna. Si se afeita el cabello, la piel desnuda es mucho menos visible que el surco yugular.
Sin embargo, la vena safena medial tiene limitaciones en muchos gatos. A menudo es tan pequeña que no se pueden recolectar 1-2 mililitros de sangre y, si lo es, a menudo se produce coagulación en la jeringa. A continuación, compartiré cómo he conquistado este problema felino.
Hace muchos años, desarrollé un fuerte deseo de tener respuestas rápidamente. Esperar unos días o incluso hasta mañana dificultaba el diagnóstico de pacientes gravemente enfermos y el seguimiento de los mismos cuando estaban en el hospital. Por lo tanto, compré máquinas de química y hematología Abaxis (ahora Zoetis Diagnostics). Fue increíble cómo esto mejoró la atención al paciente y las relaciones con los clientes.
Sin embargo, seguían existiendo más obstáculos. La siguiente técnica fue validada en un artículo publicado recientemente.1
Obstáculo Nº 1 y su solución. Nos enseñaron a usar una aguja de calibre 20 para la recolección de sangre porque el uso de agujas más pequeñas a menudo resulta en hemólisis. Este procedimiento se basa en el uso de tubos de recolección que contienen vacío y es el estándar de atención en la medicina humana.
Sin embargo, no estoy usando un tubo como este porque la cantidad de vacío a menudo colapsa las pequeñas venas del gato. Más bien, uso una jeringa de 3 cc con una aguja de calibre 25. La sangre se extrae de manera constante y relativamente lenta para evitar la hemólisis de la muestra. Si se produce un sorteo lento, la velocidad de recolección se ralentiza aún más.
Obstáculo Nº 2 y su solución. Debido a que la extracción de sangre puede ser lenta desde la vena safena medial, la coagulación de la muestra a menudo ocurre en la jeringa, lo que hace que la muestra sea inaceptable para las máquinas de química y hematología.
La solución es el cordón en el tubo de heparina de litio (LH) utilizado con la máquina química. Saco el cordón del tubo de LH y lo pongo en la jeringa. (Figura 1) Aunque su propósito declarado es ayudar a la mezcla adecuada de la muestra de sangre, el cordón tiene suficiente LH para anticoagular la sangre tan pronto como entra en la jeringa. (Figura 2) Con este enfoque, incluso las extracciones de sangre más lentas aún producen una muestra anticoagulada adecuada para la máquina química.
Obstáculo Nº 3. Por lo general, las instrucciones del fabricante indican que uno debe colocar 1,3 ml de sangre en el tubo de LH para tener la proporción adecuada entre la sangre y la LH; sin embargo, solo se usan aproximadamente 0,25 ml para realizar la prueba. Aunque algunos gatos tienen venas safenas mediales que fluyen bien, muchos no lo hacen. En algunos gatos, no es posible recolectar más de 0,5 ml de sangre.
Obstáculo Nº 4. Las instrucciones del fabricante indican que solo la sangre tratada con ácido etilendiamina tetraacético (EDTA) debe insertarse en la máquina de hematología.
Soluciones a los Nº 3 y Nº 4. La sangre se recoge con una jeringa de 3 cc y una aguja de calibre 25. Si puedo conseguir alrededor de 1,3 ml de sangre, lo hago. Si solo puedo obtener 0,5 ml, nuestro estudio muestra que también es aceptable.
Los rotores indicados se cargan directamente de la jeringa. El resto de la sangre se coloca en el tubo EDTA hecho para la máquina de hematología. El tubo se coloca en la máquina y se hace correr la muestra. Dentro de unos 15 minutos de la extracción de sangre, tengo los resultados de un perfil químico con electrolitos, un total de T4 y un CSC. Ahora estoy listo para hablar con el dueño sobre el diagnóstico y/o plan de tratamiento del gato.
Obstáculo Nº 5 y su solución. Nos han enseñado que la heparina cambiará la morfología de los glóbulos blancos, por lo que la interpretación del frotis de sangre será inexacta.
Se hicieron seis frotis de sangre en las muestras de cada gato en el estudio. Se hicieron tres láminas de sangre inmediatamente después de la extracción de sangre; no se expuso a ningún anticoagulante. Tres se hicieron después de haber estado expuesto a heparina de litio, más EDTA. Cada una estaba manchada con una mancha de sangre rápida tipo Romanowsky. Fueron leídas por un patólogo clínico veterinario certificado por la junta. Sin embargo, estaba ciego en cuanto a la fuente de las manchas de sangre. Se le encomendó específicamente la tarea de observar los cambios morfológicos que dificultarían la identificación de las células. No se encontró ninguna, y todas las diapositivas se consideraron de calidad suficiente para la interpretación.
Resultado general
Si haces esto, ¿qué va a pasar? En primer lugar, utilizará muchos más rotores químicos y reactivos hematológicos que en el pasado. En segundo lugar, es probable que el aumento de volumen le haga considerar la compra de una o más máquinas adicionales. (Tengo seis máquinas de química y dos de hematología. En tercer lugar, su atención al paciente mejorará, porque está haciendo más diagnósticos basados en la sangre. Finalmente, su práctica crecerá a medida que más y más clientes satisfechos le cuenten a sus amigos el increíble cuidado que sus gatos recibieron en su práctica.
Nota: Esta técnica fue validada para las máquinas de química y hematología de Zoetis Diagnostics. No se recomienda su uso en otras máquinas hasta que se realicen estudios similares en esas máquinas.
Nota: El único analito que se vio afectado negativamente fue el recuento de plaquetas. Puede aumentar o disminuir falsamente. Por lo tanto, si el recuento de plaquetas no parece válido, se debe examinar un frotis de sangre manchado.
Debido a esta técnica, realizamos análisis de sangre en más del 50 por ciento de los gatos que vemos. Tenemos un promedio de 337 perfiles químicos y 139 CBCs por mes en nuestra práctica felina de tres médicos. Además, también tenemos un promedio de 148 paneles tiroideos (colesterol TT4+). Imagina lo que esta técnica podría hacer por tu práctica.
Gary D. Norsworthy, DVM, DABVP (felino), es el propietario de Alamo Feline Health Center en San Antonio, Texas. Ha estado en la práctica privada durante 48 años, incluidos 23 en la práctica solo para felinos. El Dr. Norsworthy da conferencias con frecuencia sobre enfermedades felinas y es el editor y autor principal de siete libros de texto para felinos. Es especialista en felinos certificado por la junta (uno de los dos únicos en el sur de Texas) y profesor adjunto en la Facultad de Medicina Veterinaria, la Universidad Estatal de Mississippi y la Universidad Occidental de Ciencias de la Salud. Recibió el Premio al Logro de Carrera Distinguida 2020 de la Asociación Médica Veterinaria de Texas.