Par Gary D. Norsworthy, DVM, DABVP (félin)
Combien de fois avez-vous entendu, » Les chats ne sont pas de petits chiens? » Nous avons prêté une oreille attentive à ce concept tout au long de ma carrière de près de 50 ans. Cependant, la base est très réelle dans de nombreux scénarios. La collecte de sang pour les panels de chimie et la numération globulaire complète (CBC) en fait partie.
Le chat a de petites veines, souvent plus petites que les veines correspondantes des chiens car la taille du corps du chat est si petite. Recueillir suffisamment de sang pour un panel de chimie et un CBC peut être difficile au point de dissuader de diagnostiquer correctement les maladies de nos patients. Si c’est difficile à faire, cela ne se fait souvent pas.
La veine jugulaire est souvent utilisée. Cependant, le faire en présence de propriétaires de chats crée de graves problèmes de relation client. (Cela n’a pas été un problème, bien sûr, pendant la norme de non-présence de clients de la pandémie.) Vrai ou non, cela semble assez cruel. Si les cheveux sont rasés, la peau nue sert de rappel pendant deux à trois mois.
Une alternative à la collecte de sang jugulaire consiste à amener le chat « à l’arrière » – ce trou noir où vous faites des choses que vous ne voulez pas que vos clients voient. Pendant ce temps, votre client imagine plusieurs scénarios du pire des cas. Si un chat à l’hôpital crie, le propriétaire suppose que c’est son chat qui le fait et qu’il est maltraité.
À mon avis, la meilleure approche est d’utiliser la veine saphène médiale, parfois appelée « Don de Dieu au praticien félin ». »Il est généralement assez grand pour un prélèvement sanguin raisonnablement suffisant, et il se trouve sur le côté médial de la jambe. Si les cheveux sont rasés, la peau nue est beaucoup moins visible que le sillon jugulaire.
Cependant, la veine saphène médiale présente des limites chez de nombreux chats. Il est souvent si petit que 1 à 2 millilitres de sang ne peuvent pas être collectés et, si c’est le cas, la coagulation se produit souvent dans la seringue. Ci-dessous, je vais partager comment j’ai vaincu ce problème félin.
Il y a de nombreuses années, j’ai développé une forte envie d’avoir des réponses rapidement. Attendre quelques jours, voire jusqu’à demain, rendait difficile le diagnostic des patients gravement malades et leur suivi lorsqu’ils étaient à l’hôpital. Par conséquent, j’ai acheté des machines de chimie et d’hématologie Abaxis (maintenant Zoetis Diagnostics). C’était incroyable de voir comment cela améliorait les soins aux patients et les relations avec les clients.
Cependant, il restait plus d’obstacles. La technique suivante a été validée dans un article récemment publié.1
Obstacle n ° 1 et sa solution. On nous a appris à utiliser une aiguille de calibre 20 pour la collecte de sang, car l’utilisation de petites aiguilles entraîne souvent une hémolyse. Cette procédure est basée sur l’utilisation de tubes de collecte contenant du vide et constitue la norme de soins en médecine humaine.
Photos avec l’aimable autorisation de Gary D. Norsworthy
Cependant, je n’utilise pas de tube comme celui-ci car la quantité de vide effondre souvent les petites veines du chat. J’utilise plutôt une seringue de 3 cc avec une aiguille de calibre 25. Le sang est prélevé régulièrement et relativement lentement pour éviter l’hémolyse de l’échantillon. Si un tirage lent se produit, la vitesse de collecte est encore ralentie.
Obstacle n ° 2 et sa solution. Étant donné que la collecte de sang peut être lente à partir de la veine saphène médiale, la coagulation de l’échantillon se produit souvent dans la seringue, ce qui rend l’échantillon inacceptable pour la machine de chimie et les machines d’hématologie.
La solution est le cordon dans le tube d’héparine de lithium (LH) utilisé avec la machine de chimie. Je sors la perle du tube de LH et la mets dans la seringue. (Figure 1) Bien que son objectif déclaré soit d’aider au bon mélange de l’échantillon de sang, la perle contient suffisamment de LH pour anticoaguler le sang dès qu’il pénètre dans la seringue. (Figure 2) Avec cette approche, même les prélèvements sanguins les plus lents produisent toujours un échantillon anticoagulé adapté à la machine de chimie.
Obstacle no 3. En règle générale, les instructions du fabricant indiquent qu’il faut mettre 1,3 ml de sang dans le tube de LH pour avoir le rapport approprié entre le sang et la LH; cependant, seulement environ 0,25 ml sont réellement utilisés pour effectuer le test. Bien que certains chats aient des veines saphènes médiales qui coulent bien, beaucoup ne le font pas. Chez certains chats, la collecte de plus de 0,5 ml de sang n’est pas possible.
Obstacle n° 4. Les instructions du fabricant indiquent que seul le sang traité à l’acide éthylènediamine tétraacétique (EDTA) doit être inséré dans la machine d’hématologie.
Solutions aux n° 3 et n°4. Le sang est prélevé à l’aide d’une seringue de 3 cc et d’une aiguille de calibre 25. Si je peux avoir environ 1,3 ml de sang, je le fais. Si je ne peux obtenir que 0,5 ml, notre étude montre que c’est également acceptable.
Les rotors indiqués sont chargés directement hors de la seringue. Le reste du sang est placé dans le tube EDTA conçu pour la machine d’hématologie. Le tube est placé dans la machine et l’échantillon est exécuté. Dans environ 15 minutes après la collecte de sang, j’ai les résultats d’un profil chimique avec des électrolytes, un T4 total et un CBC. Je suis maintenant prêt à parler au propriétaire du diagnostic et / ou du plan de traitement du chat.
Obstacle n ° 5 et sa solution. On nous a appris que l’héparine modifierait la morphologie des globules blancs, de sorte que l’interprétation des frottis sanguins sera inexacte.
Six frottis sanguins ont été effectués sur les échantillons de chaque chat de l’étude. Trois lames ont été faites à partir de sang immédiatement après le prélèvement sanguin; il n’a été exposé à aucun anticoagulant. Trois ont été fabriqués après avoir été exposés à l’héparine de lithium, plus l’EDTA. Chacun était taché d’une tache de sang rapide de type Romanowsky. Ils ont été lus par un pathologiste clinique vétérinaire certifié par le conseil. Cependant, il était aveuglé quant à la source des frottis sanguins. Il a été spécifiquement chargé d’observer les changements morphologiques qui rendraient l’identification des cellules difficile. Aucune n’a été trouvée et toutes les diapositives ont été jugées de qualité suffisante pour l’interprétation.
Résultat global
Si vous faites cela, que va-t-il se passer? Tout d’abord, vous utiliserez beaucoup plus de rotors de chimie et de réactifs d’hématologie que par le passé. Deuxièmement, vous constaterez probablement que l’augmentation du volume vous amènera à envisager l’achat d’une ou plusieurs machines supplémentaires. (J’ai six machines de chimie et deux machines d’hématologie.) Troisièmement, vos soins aux patients s’amélioreront, car vous faites plus de diagnostics à base de sang. Enfin, votre pratique se développera à mesure que de plus en plus de clients satisfaits parleront à leurs amis des soins incroyables que leurs chats ont reçus dans votre pratique.
Remarque : Cette technique a été validée pour les machines de chimie et d’hématologie Zoetis Diagnostics. Son utilisation sur d’autres machines n’est pas recommandée tant que des études similaires ne sont pas effectuées sur ces machines.
Remarque: Le seul analyte qui a été affecté négativement était la numération plaquettaire. Il peut être faussement augmenté ou diminué. Par conséquent, si la numération plaquettaire ne semble pas valide, il faut examiner un frottis de sang taché.
Grâce à cette technique, nous effectuons des tests sanguins sur plus de 50% des chats que nous voyons. Nous avons en moyenne 337 profils de chimie et 139 CBCs par mois dans notre cabinet félin de trois médecins. De plus, nous avons également en moyenne 148 panneaux thyroïdiens (cholestérol TT4 +). Imaginez ce que cette technique pourrait faire pour votre pratique.
Gary D. Norsworthy, DVM, DABVP (félin), est le propriétaire du centre de santé Alamo Feline à San Antonio, au Texas. Il est en pratique privée depuis 48 ans, dont 23 en pratique féline seulement. Le Dr Norsworthy donne fréquemment des conférences sur les maladies félines et est l’éditeur et l’auteur principal de sept manuels sur les félins. Il est spécialiste félin certifié par le conseil (l’un des deux seuls au sud du Texas) et professeur auxiliaire au Collège de médecine vétérinaire, à l’Université d’État du Mississippi et à l’Université des Sciences de la Santé de l’Ouest. Il a reçu le Distinguished Career Achievement Award 2020 de la Texas Veterinary Medical Association.
